Рис. 6.1(тр). Аптамеры: общая схема получения — Рис. 78m. Функциональные поля полушарий большого мозга

  • Рис. 6.1(тр). Аптамеры: общая схема получения
  • Рис. 6.1. imm_gal
  • Рис. 6.10 cs3 Доменная структура РМСА
  • рис. 6.10 im схема активации B лимфоцитов
  • Рис. 6.10(epig). Изображения N. crassa
  • Рис. 6.10(нер). Токи натриевых каналов
  • Рис. 6.10. imm_gal
  • Рис. 6.11 cs3 Модель механизма действия Са2+ АТР-азы СР
  • Рис. 6.11(epig). Индуцированная повторами точечная мутация (RIP)
  • Рис. 6.11(нер). Спираль S4
  • Рис. 6.11. imm_gal
  • Рис. 6.12 cs3 Структура свободного и связанного с Са2+ кальмодулина
  • Рис. 6.12(epig). Мутации от RIP
  • Рис. 6.12(нер). Инактивация калиевого канала
  • Рис. 6.12. imm_gal
  • Рис. 6.13(epig). Подавление (quelling)
  • Рис. 6.13(нер). Влияние поверхностного заряда
  • Рис. 6.13. imm_gal
  • рис. 6.14 im Влияние цитокинов на пролиферацию B клеток
  • Рис. 6.14(epig). MSUD
  • Рис. 6.14. imm_gal
  • Рис. 6.15(epig). Neurospora crassa
  • Рис. 6.16(epig). Организация района центромеры 7 у N. crassa
  • Рис. 6.2 cs3 Строение субъединицы a1 потенциал-управляемого Ca2+ канала
  • Рис. 6.2(epig). Центромеры дробянковых дрожжей S. pombe
  • Рис. 6.2(нер). Натриевая и калиевая проводимости
  • Рис. 6.2(рез). Сшивка сигма-субъединицы с 5'-концом РНК-транскрипта
  • Рис. 6.2. imm_gal
  • рис. 6.2hl Атероматозная бляшка
  • рис. 6.3
  • Рис. 6.3 cs3 Схема контакта между сарколеммой и ЭР (T-трубочки)
  • Рис. 6.3 б
  • Рис. 6.3(epig). Мозаицизм и облегчение сайленсинга маркерных генов
  • Рис. 6.3(нер). Мембранные токи
  • Рис. 6.3(рез). Эффективность перехода от инициации к элонгации
  • Рис. 6.3. imm_gal
  • Рис. 6.4 cs3 Механизмы и пути входа Са2+ в клетку при активации рецептора
  • Рис. 6.4(epig). "Молчащий" хроматин в ядрах S. pombe
  • Рис. 6.4(нер). Мембранные токи
  • Рис. 6.4(рез). Синтез абортивных и полноразмерных транскриптов
  • Рис. 6.4. imm_gal
  • рис. 6.5
  • Рис. 6.5 cs3 Сопряжение рианодинового и IP3 рецепторов с каналами
  • Рис. 6.5(epig). Нуклеотидные последовательности центромерных повторов
  • Рис. 6.5(нер). Потенциалзависимость токов
  • Рис. 6.5. imm_gal
  • Рис. 6.6 cs3 Трехмерная структура рианодинового рецептора мышц
  • Рис. 6.6(epig). Транскрипция центромерных повторов
  • Рис. 6.6(нер). Мембранный потенциал
  • Рис. 6.6. imm_gal
  • Рис. 6.7 cs3 IP3 рецептор- Са2+ канал
  • Рис. 6.7(epig). Дефектное расхождение хромосом
  • Рис. 6.7(нер). Натриевая и калиевая проводимости
  • Рис. 6.7. imm_gal
  • Рис. 6.8 cs3 Вероятность открытия канала IP3 рецептора от Са2+ и IP3
  • рис. 6.8 im упрощенная схема активации лимфоцитов
  • Рис. 6.8(epig). Установление и поддержание хроматина CENP-A
  • Рис. 6.8(нер). Потенциал действия
  • Рис. 6.8. imm_gal
  • Рис. 6.9 cs3 Цикл работы Ca2+-ATPазы
  • рис. 6.9 im схема активации лимфоцитов
  • Рис. 6.9(epig). Жизненный цикл N. crassa
  • Рис. 6.9(нер). Воротной ток
  • Рис. 6.9. imm_gal
  • Рис. 6.gcsf Пути передачи сигнала Г-КСФ Jak-Stat и Ras-Map от Г-КСФР в ядро клетки
  • Рис. 60 (zu) Псаммофильные инфузории из морского песка
  • рис. 60 esk Вымершие представители мамонтовой фауны
  • Рис. 60(бот-ка). Форма листовой пластинки
  • Рис. 60(микр). Маслянокислое брожение
  • Рис. 60(сист). Ужовниковые и мараттиевые
  • Рис. 60. Жизненный цикл ретровируса
  • Рис. 60. Схема глаза птицы
  • Рис. 60. Щитковое (Psammolepis venlukovi) девонского периода
  • Рис. 60.1(Harrison). Основные этапы сосудисто-тромбоцитарного гемостаза
  • Рис. 60.2(Harrison). Адгезия и агрегация тромбоцитов
  • Рис. 60.3(Harrison). Активация и дегрануляция тромбоцитов
  • Рис. 60.4(Harrison). Тромбоксан A2 и простациклин
  • Рис. 60.5(Harrison). Схема свертывания крови
  • Рис. 60.6(Harrison). Схема основных реакций свертывания крови
  • Рис. 60.7(Harrison). Внешний механизм свертывания и его ингибитор
  • Рис. 60.8(Harrison). Схема фибринолиза
  • Рис. 60.9(Harrison). Время кровотечения и число тромбоцитов
  • Рис. 60m. Борозды и извилины лобной области полушария головного мозга
  • Рис. 61 (zu) Четыре инфузории Didinium nasutum, пожирающие инфузорию туфельку
  • рис. 61 esk Климат последнего тысячелетия
  • Рис. 61(бот-ка). Верхушка, основание и край листовой пластинки
  • Рис. 61(микр). Спорообразование у клостридиев
  • Рис. 61(сист). Схизейные и гименофилловые
  • Рис. 61. Поля зрения у ястреба
  • Рис. 61. Схема клеточного цикла
  • Рис. 61. Щитковое (Anaspida, Pterolepis hitida) силурского периода
  • Рис. 61.1(Harrison). Схема строения селезенки
  • Рис. 61m. Борозды и извилины височной области полушария головного мозга
  • Рис. 62 (zu) Равноресничная инфузория Ichthyophthirius multifilus - паразит пресноводных рыб
  • рис. 62 esk Географическая история сумчатых
  • Рис. 62(бот-ка). Типы расчленения пластинки простого листа
  • Рис. 62(микр). Фиксация CO2 у гомоацетатных клостридиев
  • Рис. 62(сист). Папоротники
  • Рис. 62. Находящийся в спячке американский белогорлый козодой
  • Рис. 62. Панцирные рыбы
  • Рис. 62. Схема митотического цикла
  • Рис. 62.1(Harrison). Развитие воспаления
  • Рис. 62.2(Harrison). Стадии развития нейтрофилов
  • Рис. 62.3(Harrison). Распределение нейтрофилов в организме
  • Рис. 62.4(Harrison). Нейтрофилы в сосудистом русле
  • Рис. 62m. Борозды и извилины на базальной поверхности конечного мозга
  • Рис. 63 (zu) Инфузории отряда Entodiniomorpha семейства Ophryoscolecidae, живущие в рубце жвачных
  • рис. 63 esk Пример южнополушарной дизъюнкции
  • Рис. 63(бот-ка). Формы листовых пластинок
  • Рис. 63(микр). Функционирование нитрогеназы
  • Рис. 63(сист). Марсилиевые
  • Рис. 63. Cladoselache - верхнедевонская акулоподобная рыба
  • Рис. 63. Расселение молодняка сипух (Tyto) по данным кольцевания
  • Рис. 63. Схема строения интерфазной (вверху) и метафазной хромосом.
  • Рис. 63m. Базальные ядра полушария конечного мозга
  • Рис. 64 (zu) Ресничные инфузории
  • рис. 64 esk Схема, отражающая степень родства между комарами-звонцами
  • Рис. 64(бот-ка). Типы жилкования листьев
  • Рис. 64(микр). Окислительный пентозофосфатный путь (начальные этапы)
  • Рис. 64(сист). Сальвиния плавающая (Salvinia natans)
  • Рис. 64. Palaeoniscus из пермских отложений
  • Рис. 64. Верхнепермские и триасовые звероподобные пресмыкающиеся
  • Рис. 64. Метафазные хромосомы
  • Рис. 64.1(Harrison). Обследование молочных желез
  • Рис. 64.2(Harrison). Алгоритм обследования молочных желез
  • Рис. 64.3(Harrison). Тактика обследования при кисте молочной железы
  • Рис. 64.4(Harrison). Тактика обследования при изменениях на маммограмме
  • Рис. 64m. Полушария конечного мозга и базальные ядра
  • Рис. 65 (zu) Разные представители отряда кругоресничных инфузорий (Peritricha)
  • рис. 65 esk Циркумпацифическое домино - вероятный ход сокращения первоначально единого биполярного циркумпацифического ареала.
  • рис. 65 Филогенетическое древо надкласса рыб
  • Рис. 65(бот-ка). Главнейшие зоны молодого корня
  • Рис. 65(микр). Гетероферментативное молочнокислое брожение
  • Рис. 65(сист). Праголосеменные
  • Рис. 65. Цинодонт Trinaxodon
  • Рис. 65. Цитокинез клеток (фотография)
  • Рис. 65.1(Harrison). Геном человека
  • Рис. 65.10(Harrison). Применение ДНК-чипов в генодиагностике
  • Рис. 65.11(Harrison). Полиморфизм длин рестрикционных фрагментов
  • Рис. 65.12(Harrison). Полиморфизм короткого тандемного повтора
  • Рис. 65.13(Harrison). Мейотический кроссинговер и анализ сцепления
  • Рис. 65.14(Harrison). Позиционное клонирование
  • Рис. 65.15(Harrison). Гены, вызывающие заболевания, распределение по хромосомам
  • Рис. 65.16(Harrison). Трансгенные и мутантные мыши
  • Рис. 65.17(Harrison). Родословная при аутосомно-доминантной болезни
  • Рис. 65.18(Harrison). Геномный импринтинг
  • Рис. 65.19(Harrison). Родословная при аутосомно-рецессивной болезни
  • Рис. 65.2(Harrison). Строение гена эукариот
  • Рис. 65.20(Harrison). Родословная при X-сцепленной болезни
  • Рис. 65.21(Harrison). Родословная при X-сцепленной доминантной болезни
  • Рис. 65.22(Harrison). X-сцепленная доминантная болезнь летальная
  • Рис. 65.23(Harrison). Рекомендуемая форма составления родословной
  • Рис. 65.24(Harrison). Анализ ДНК в генодиагностике
  • Рис. 65.25(Harrison). Анализ генов глобина у человека
  • Рис. 65.26(Harrison). ДНК больных миопатией Дюшенна
  • Рис. 65.27(Harrison). Делеции в гене дистрофина
  • Рис. 65.28(Harrison). Анализ числа тринуклеотидных повторов
  • Рис. 65.29(Harrison). Геномная ДНК, амплифицированная путем ПЦР
  • Рис. 65.3(Harrison). Генетический код
  • Рис. 65.30(Harrison). Обратный дот-блоттинг
  • Рис. 65.31(Harrison). Анализ на укороченные белки
  • Рис. 65.32(Harrison). Анализ сцепления генов
  • Рис. 65.4(Harrison). Точечные мутации при бета-талассемии
  • Рис. 65.5(Harrison). Эндонуклеазная активность рестриктаз
  • Рис. 65.6(Harrison). Блоттинг по Саузерну
  • Рис. 65.7(Harrison). Амплификация ДНК методом ПЦР
  • Рис. 65.8(Harrison). Анализ на укороченные белки
  • Рис. 65.9(Harrison). Методы выявления мутаций
  • Рис. 65m. Периферическая часть обонятельного отдела конечного мозга
  • Рис. 66
  • Рис. 66 (zu) Кругоресничная колониальная инфузория Zoothamnium arbuscula
  • рис. 66 esk Филогения высших растений и географическая приуроченность основных филогенетических линий
  • Рис. 66(бот-ка). Срез корня двудольного растения
  • Рис. 66(микр). Окислительный пентозофосфатный путь (конечные этапы)
  • Рис. 66(сист). Развитие мужского гаметофита голосеменных
  • Рис. 66. Филогенетическое древо костных рыб
  • Рис. 66. Юрские млекопитающие
  • Рис. 66.1(Harrison). Метафазные хромосомы лимфоцитов человека
  • Рис. 66.2(Harrison). Клеточный цикл: изменение содержания ДНК
  • Рис. 66.3(Harrison). С-окрашивание метафазных хромосом
  • Рис. 66.4(Harrison). Ионизирующее излучение и хромосомы
  • Рис. 66m. Периферическая часть обонятельного отдела конечного мозга
  • Рис. 67 (zu) Кругоресничная инфузория рода Trichodina
  • Рис. 67(бот-ка). Поперечный срез корня растения
  • Рис. 67(микр). Путь Энтнера-Дудорова
  • Рис. 67(сист). Семязачаток хвойных (сосна, Pinus)
  • Рис. 67. Melanodon
  • Рис. 67. Кистеперая рыба (Undina pencillata) из верхней юры
  • Рис. 67. Неполный метаморфоз у кузнечика
  • Рис. 67.1(Harrison). Последствия метаболических нарушений
  • Рис. 67.2(Harrison). Сравнение методов соматической генотерапии
  • Рис. 67m. Свод головного мозга
  • Рис. 68 (zu) Различные разноресничные инфузории (Heterotricha)
  • Рис. 68(бот-ка). Центральный осевой цилиндр корня
  • Рис. 68(микр). Хлорофиллы (обобщенная формула)
  • Рис. 68(сист). Интегумент семязачатков голосеменных
  • Рис. 68. Родственные отношения мезозойских млекопитающих
  • Рис. 68. Схема метаморфоза у лягушки
  • Рис. 68.1(Harrison). Динамика сывороточной концентрации лидокаина
  • Рис. 68.2(Harrison). Накопление дигоксина при ежедневных введениях
  • Рис. 68.3(Harrison). Сывороточные концентрации лекарственных веществ
  • Рис. 68.4(Harrison). Сывороточные концентрации лекарственных веществ
  • Рис. 68.5(Harrison). Коррекция дозы при почечной недостаточности
  • Рис. 68.6(Harrison). Терапевтический эффект лекарственных средств
  • Рис. 68m. Лимбическая система
  • Рис. 69
  • Рис. 69 (zu) Брюхоресничная инфузория Stylonichia mytilus
  • Рис. 69(бот-ка). Стадии вторичного роста в корне двудольных растений
  • Рис. 69(микр). Хромофорные группы фикоэритробилина, фикоцианина и фикоцианобилина.
  • Рис. 69(сист). Семязачаток голосеменных
  • Рис. 69. Позвоночный столб лягушки вместе с тазовым поясом
  • Рис. 69. Родословное древо плацентарных млекопитающих
  • Рис. 69m. Латеральные (боковые) желудочки головного мозга
  • Рис. 6: Генерация мембранного потенциала митохондриями End. magnusii
  • Рис. 6m. Спинной и головной мозг
  • рис. 6липген
  • Рис. 7 коп
  • Рис. 7 (zu) Стадии бесполого размножения пресноводной корненожки Euglypha alveolata
  • Рис. 7 adg Пути связи микротрубочек с регуляторной Rac
  • Рис. 7 esk Траектории движения полюса относительно континентов
  • рис. 7 im Контроль образования легких цепей иммуноглобулинов
  • Рис. 7 nuctra . Механизм NLS-зависимого импорта белков
  • Рис. 7 pat
  • Рис. 7 rnaed РНК-редактирование обнаружено во всех существующих группах растений
  • Рис. 7 svtr
  • Рис. 7 Кра
  • Рис. 7 Схема генома вируса ВИЧ
  • Рис. 7 трг
  • Рис. 7(ct5). Саггитальная ультрасонограмма (7 Мгц) при пиометре
  • Рис. 7(fl). Клевер луговой, или красный
  • Рис. 7(lp). Классы бактерий из снега Антарктики
  • Рис. 7(ner19). Вентродорсальный снимок с множественными переломами
  • Рис. 7(pt17). Дорсовентральные рентгеновские снимки варана
  • Рис. 7(pt28). Головной мозг (рыбы)
  • Рис. 7(vv1). Лейкоцитарные цитограммы 3-х собак
  • Рис. 7(zh). Лидерная последовательность tyrS B. subtilis
  • Рис. 7(антр). Географическое распространение современных приматов
  • Рис. 7(бот-ка). Строение клеточных мембран
  • Рис. 7(гл). Химические формулы кумаринов
  • Рис. 7(микр). Пептидные мостики между гетерополимерными цепочками
  • Рис. 7(сист). Система Хатчинсона
  • Рис. 7(ток). Зарядка емкости
  • рис. 7-1 md
  • рис. 7-3 cep Альдостерон: действие на транспорт натрия в клетке
  • рис. 7-7сер АКТГ стимуляция синтеза кортизола в клетке
  • рис. 7-8сер регуляция Na, K в плазме, ренин, ангиотензин, альдостерон
  • Рис. 7. slom Роль ГТФ циклогидролазы 1(GTPCH1) в обмене ароматических аминокислот и синтезе тетрагидробиоптерина
  • рис. 7. Белки-регуляторы р21ras
  • Рис. 7. Гаттерия
  • Рис. 7. Регуляция транскрипции гена bdnf транскрипционными факторами
  • Рис. 7. Строение личинки асцидий
  • Рис. 7. Схема строения белковой молекулы:
  • Рис. 7.1 cs3 Активация PKA (ПКА) сАМР
  • Рис. 7.1(allerg). Бронхиальная астма: морфологические изменения
  • Рис. 7.1(epig). Жизненные циклы Paramecium и Tetrahymena
  • Рис. 7.1(Lvn). Зависимость АДГ и механизма жажды от осмоляльности
  • Рис. 7.1(г-скв). Ишемия мозга: регуляция жизнедеятельности клетки
  • Рис. 7.1(нер). Токи в мембране аксона
  • Рис. 7.1(рез). Активность РНКП E.coli, T. aquaticus и D. radiodurans
  • Рис. 7.1(тр). Сайт-направленный отбор аптамеров
  • Рис. 7.1. imm_gal
  • Рис. 7.10(epig). Модель сканирования транскриптома у инфузорий
  • Рис. 7.10. imm_gal
  • рис. 7.11 im Кооперация клеток в имунных реакциях
  • Рис. 7.11. imm_gal
  • рис. 7.12 im активация T хелперов и T киллеров
  • Рис. 7.12. imm_gal
  • Рис. 7.13. imm_gal
  • Рис. 7.14. imm_gal
  • Рис. 7.2 cs3 Доменная структура семейства протеинкиназ С (PKC)
  • Рис. 7.2(allerg). Бронхиальная астма: патогенез воспаления
  • Рис. 7.2(epig). Менделевская vs. цитоплазматическая наследственность
  • Рис. 7.2(Lvn). Зависимость АДГ от осмоляльности при изменениях ОЦК
  • Рис. 7.2(г-скв). Ишемия мозга: молекулярные реакции ткани мозга
  • Рис. 7.2(нер). Влияние емкости на потенциал
  • Рис. 7.2(рез). Кинетика присоединения нуклеотида РНКП
  • Рис. 7.2(тр). Отбор регулируемых аптамеров
  • Рис. 7.2. imm_gal
  • Рис. 7.3 cs3 Активация PKC требует фосфорилирования каталитического домена и отсоединения псевдосубстрата
  • Рис. 7.3(allerg). Исследование функции внешнего дыхания
  • Рис. 7.3(epig). Структурное наследование полярности у Paramecium
  • Рис. 7.3(нер). Распространение потенциала вдоль аксона
  • Рис. 7.3(рез). Структурные элементы активного центра РНКП
  • Рис. 7.3(тр). Активный центр РНК-полимеразы
  • Рис. 7.3. imm_gal
  • Рис. 7.4 cs3 Домены PKC
  • рис. 7.4 im перестройка генов иммуноглобулинов
  • Рис. 7.4(allerg). Бронхиальная астма: ОВФ1, ПОС и СОС25-75%
  • Рис. 7.4(epig). Ядерный диморфизм у инфузорий
  • Рис. 7.4(нер). Мембранный ток
  • Рис. 7.4(рез). Последовательности F-петли, F-спирали и G-петли
  • Рис. 7.4. imm_gal
  • Рис. 7.5 cs3 Общая структура и активация тирозинкиназных рецепторов на примере активации EGF рецептора
  • рис. 7.5 im переключение синтеза иммуноглобулинов
  • Рис. 7.5(allerg). Бронхиальная астма: легочные объемы
  • Рис. 7.5(epig). Перестройки ДНК у инфузорий
  • Рис. 7.5(нер). Ток в миелинизированном волокне
  • Рис. 7.5(рез). Скорость синтаза РНК различными РНКП
  • Рис. 7.5. imm_gal
  • Рис. 7.6 cs3 Образование рецепторных сигнальных комплексов
  • рис. 7.6 im Кинетика вторичного имунного ответа
  • Рис. 7.6(allerg). Бронхиальная астма: раО2 и раСО2
  • Рис. 7.6(epig). Индуцированные трансгеном делеции у Paramecium
  • Рис. 7.6(нер). Распределение каналов в миелинизированных аксонах
  • Рис. 7.6(рез). Влияние стрептолидигина на активность РНКП
  • Рис. 7.6. imm_gal
  • Рис. 7.7 cs3 Активация протеинкиназы В при действии инсулина
  • Рис. 7.7(allerg). Постуральный дренаж и перкуссионный массаж
  • Рис. 7.7(epig). Эпигенетическое наследование макронуклеарного гена A
  • Рис. 7.7(нер). Потенциал действия в дендритах
  • Рис. 7.7(рез). Синтез РНК в активном центре РНКП
  • Рис. 7.7. imm_gal
  • Рис. 7.8 cs3 Фосфоинозитид 3-киназы: генерация 3-фосфорилированных липидов
  • Рис. 7.8(epig). Подавление эксцизии IES материнским макронуклеусом
  • Рис. 7.8(нер). Щелевые соединения между нейронами
  • Рис. 7.8. imm_gal
  • Рис. 7.9(epig). Модель сканирования РНК
  • Рис. 7.9. imm_gal
  • Рис. 70 Получение целого растения из отдельной клетки моркови
  • Рис. 70 (zu) Сосущая инфузория Sphaerophrуа
  • Рис. 70(бот-ка). Типы микоризы
  • Рис. 70(микр). Каротиноиды фотосинтезирующих эубактерий
  • Рис. 70(сист). Жизненные формы саговников
  • Рис. 70. Самка кенгуру, вылизывающая дорожку для новорожденного
  • Рис. 70. Череп лягушки
  • Рис. 70.1(Harrison). Вегетативная нервная система
  • Рис. 70.2(Harrison). Синтез, высвобождение и распад катехоламинов
  • Рис. 70.3(Harrison). Симпатическая регуляция гемодинамики
  • Рис. 70.4(Harrison). Схема структуры адренорецептора
  • Рис. 70.5(Harrison). Регуляторные белки и вторые посредники
  • Рис. 70.6(Harrison). Влияние симпатической нервной системы на АД
  • Рис. 70m. Латеральные (боковые) желудочки головного мозга
  • Рис. 71 (zu) Сосущая инфузория Dendrocometes paradoxum с разветвленными щупальцами
  • Рис. 71(бот-ка). Клубеньки на корнях люпина
  • Рис. 71(микр). Спектры поглощения эубактерий
  • Рис. 71(сист). Репродуктивные органы саговников (Cycadales)
  • Рис. 71. Плечевой пояс лягушки спереди
  • Рис. 71. Схема процесса мейоза
  • Рис. 71. Схема скелета летучей мыши
  • Рис. 71.1(Harrison). Синтез NO
  • Рис. 71m. Сосудистые сплетения в головном мозге
  • Рис. 72 (zu) Разные формы почкования сосущих инфузорий
  • Рис. 72(бот-ка). Пути восходящего и нисходящего потока растений
  • Рис. 72(микр). Светособирающие пигменты эубактерий
  • Рис. 72(сист). Строение семязачатков саговников
  • Рис. 72. Грудная клетка и передняя конечности птицы и летучей мыши
  • Рис. 72. Скелет лягушки
  • Рис. 72. Хромосомы типа ламповых щеток
  • Рис. 72m. Полушария конечного мозга
  • Рис. 73 (zu) Организация Trichoplax
  • Рис. 73(бот-ка). Дифференцировка однородных меристематических клеток
  • Рис. 73(микр). Электронные переходы в молекуле хлорофилла
  • Рис. 73(сист). Беннеттиты (Bennettitopsida)
  • Рис. 73. Место мейоза в жизненном цикле организмов
  • Рис. 73. Общее расположение внутренностей самки лягушки
  • Рис. 73. Расположение жевательной мускулатуры у грызунов
  • Рис. 73m. Черепно-мозговые нервы: места выхода из головного мозга
  • Рис. 74 (zu) Различные типы строения губок и их канальной системы
  • Рис. 74(бот-ка). Половой процесс у растений и грибов
  • Рис. 74(микр). Миграция энергии света у зеленой бактерии Chloroflexus aurantiacus
  • Рис. 74(сист). Эфедровые и вельвичиевые
  • Рис. 74. Комплексы кровеносных сосудов в плавнике дельфина
  • Рис. 74. Схема развития мужских и женских половых клеток
  • Рис. 74. Схема строения вскрытого сердца лягушки
  • Рис. 74.1(Harrison). Белково-энергетическая недостаточность
  • Рис. 74m. Черепно-мозговые нервы: места выхода из головного мозга
  • Рис. 75 (zu) Схематический разрез через стенку тела губки типа аскона
  • Рис. 75(бот-ка). Соотношение гаметофита и спорофита в эволюции растений
  • Рис. 75(микр). Организация фотосинтетического аппарата разных групп эубактерий
  • Рис. 75(сист). Гнетум (Gnetum)
  • Рис. 75. Головной мозг лягушки
  • Рис. 75. Строение сперматозоида
  • Рис. 75. Схема эхолокации дельфина
  • Рис. 75.1(Harrison). Индекс массы тела
  • Рис. 75.10(Harrison). Хирургическое лечение ожирения
  • Рис. 75.2(Harrison). Рост числа людей с избыточным весом
  • Рис. 75.3(Harrison). Состав и калорийность обычного рациона
  • Рис. 75.4(Harrison). Потреблением знергии у больных ожирением
  • Рис. 75.5(Harrison). Регуляция прихода и расхода энергии
  • Рис. 75.6(Harrison). Смертность и индекс массы тела
  • Рис. 75.7(Harrison). Оценка опасности ожирения
  • Рис. 75.8(Harrison). Вес тела и физическая нагрузка
  • Рис. 75.9(Harrison). Испытание анорексантов
  • Рис. 75m. Морфологические структуры головного мозга
  • Рис. 76 (zu) Общий вид губки Sycon raphanus со вскрытой парагастральной полостью
  • Рис. 76(бот-ка). Спороношение гаплоидных организмов
  • Рис. 76(микр). Восстановительный цикл трикарбоновых кислот
  • Рис. 76(сист). Ископаемые и современные гинкговые (Ginkgoopsida)
  • Рис. 76. Мочеполовая система самца лягушки
  • Рис. 76. Форма тела и характер передвижения млекопитающих
  • Рис. 76. Фотография яйцеклетки моллюска с множеством сперматозоидов
  • Рис. 76m. Морфологические структуры головного мозга
  • Рис. 77 (zu) Жгутиковая камера пресноводной губки Ephijdatia
  • Рис. 77(бот-ка). Спороношение диплоидных организмов
  • Рис. 77(микр). Восстановительный пентозофосфатный цикл
  • Рис. 77(сист). Кордаит (Cordaites)
  • Рис. 77. Артериальные дуги хвостатой амфибии
  • Рис. 77. Двойное оплодотворение у цветкового растения
  • Рис. 77. Строение кожи млекопитающих
  • Рис. 77m. Подкорковые структуры головного мозга
  • Рис. 78 (zu) Нервные элементы тела губки Sycon raphanus
  • Рис. 78(бот-ка). Спорангий листостебельного мха кукушкина льна
  • Рис. 78(микр). Пурпурные бактерии
  • Рис. 78(сист). Репродуктивные органы хвойных (сосна)
  • Рис. 78. Развитие (А) и строение (6) волоса
  • Рис. 78.1(Harrison). Назначение искусственного питания
  • Рис. 78m. Функциональные поля полушарий большого мозга
  •